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Bifidobacterium longum

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Representative morphologic characteristics of B. longum subsp. longum strains

Bifidobacterium longum is a Gram-positive, catalase-negative, rod-shaped bacterium present in the human gastrointestinal tract and one of the 32 species that belong to the genus Bifidobacterium.[2][3] It is a microaerotolerant anaerobe and considered to be one of the earliest colonizers of the gastrointestinal tract of infants.[2] When grown on general anaerobic medium, B. longum forms white, glossy colonies with a convex shape.[4] B. longum is one of the most common bifidobacteria present in the gastrointestinal tracts of both children and adults.[5] B. longum is non-pathogenic, is often added to food products,[2][6] and its production of lactic acid is believed to prevent growth of pathogenic organisms.[7]

Classification

In 2002, three previously distinct species of Bifidobacterium, B. infantis, B. longum, and B. suis, were unified into a single species named B. longum with the biotypes infantis, longum, and suis, respectively.[8] This occurred as the three species had extensive DNA similarity including a 16S rRNA gene sequence similarity greater than 97%.[9] In addition, the three original species were phenotypically difficult to distinguish due to different carbohydrate fermentation patterns among strains of the same species.[2] As probiotic activity varies among strains of B. longum, interest exists in the exact classification of new strains, although this is made difficult by the high gene similarity between the three biotypes.[10] Currently, strain identification is done through polymerase chain reaction (PCR) on the subtly different 16S rRNA gene sequences.[10]

Environment

B. longum colonizes the human gastrointestinal tract, where it, along with other Bifidobacterium species, represents up to 90% of the bacteria of an infant's gastrointestinal tract.[3] This number gradually drops to 3% in an adult's gastrointestinal tract as other enteric bacteria such as Bacteroides and Eubacterium begin to dominate.[7] Some strains of B. longum were found to have high tolerance for gastric acid and bile, suggesting that these strains would be able to survive the gastrointestinal tract to colonize the lower small and large intestines.[6][11] The persistence of B. longum in the gut is attributed to the glycoprotein-binding fimbriae structures and bacterial polysaccharides, the latter of which possess strong electrostatic charges that aid in the adhesion of B. longum to intestinal endothelial cells.[2][12] This adhesion is also enhanced by the fatty acids in the lipoteichoic acid of the B. longum cell wall.[12]

Metabolism

B. longum is considered to be a scavenger, possessing multiple catabolic pathways to use a large variety of nutrients to increase its competitiveness among the gut microbiota.[7] Up to 19 types of permease exist to transport various carbohydrates with 13 being ATP-binding cassette transporters.[13] B. longum has several glycosyl hydrolases to metabolise complex oligosaccharides for carbon and energy.[3] This is necessary as mono- and disaccharides have usually been consumed by the time they reach the lower gastrointestinal tract where B. longum resides.[2] In addition, B. longum can uniquely ferment galactomannan-rich natural gum using glucosaminidases and alpha-mannosidases that participate in the fermentation of glucosamine and mannose, respectively.[2] The high number of genes associated with oligosaccharide metabolism is a result of gene duplication and horizontal gene transfer, indicating that B. longum is under selective pressure to increase its capability to compete for various substrates in the gastrointestinal tract.[2] Furthermore, B. longum possesses hydrolases, deaminases, and dehydratases to ferment amino acids.[2] B. longum also has bile salt hydrolases to hydrolyze bile salts into amino acids and bile acids. The function of this is not clear, although B. longum could use the amino acids products to better tolerate bile salts.[14]

Pathogenesis

A number of cases of B. longum infection have been reported in the scientific literature. These are primarily cases in preterm infants that are undergoing probiotic treatment,[15][16][17] although there are also reports of infection in adults.[18][19][20] Infection in preterm infants manifests as bacteremia or necrotizing enterocolitis,[21] while in adults there have been reports of sepsis and peritonitis.[22][23]

Research

B. longum is a constituent in VSL#3. This proprietary, standardized, formulation of live bacteria may be used in combination with conventional therapies to treat ulcerative colitis, and requires a prescription.[24]

Immune system regulation

The use of B. longum was shown to shorten the duration and minimize the severity of symptoms associated with the common cold with a similar effect to that of neuraminidase inhibitors for influenza.[25]

Bifidobacterium longum 35624

Bifidobacterium longum ssp. longum 35624, previously classified as Bifidobacterium longum ssp. infantis 35624, classified as Bifidobacterium infantis 35624 before that and still marketed as such. It is sold under the brand name Align in the US and Canada and Alflorex in Ireland, the UK and other European countries. It is patented. This strain was isolated directly from the epithelium of the terminal ileum of a healthy human subject, and is one of the most researched probiotic strains.[26] Large scale clinical trials have shown that the strain is effective in controlling the symptoms of IBS including bloating, diarrhoea, abdominal pain and discomfort[27]

See also

References

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Bifidobacterium longum: Brief Summary

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Representative morphologic characteristics of B. longum subsp. longum strains

Bifidobacterium longum is a Gram-positive, catalase-negative, rod-shaped bacterium present in the human gastrointestinal tract and one of the 32 species that belong to the genus Bifidobacterium. It is a microaerotolerant anaerobe and considered to be one of the earliest colonizers of the gastrointestinal tract of infants. When grown on general anaerobic medium, B. longum forms white, glossy colonies with a convex shape. B. longum is one of the most common bifidobacteria present in the gastrointestinal tracts of both children and adults. B. longum is non-pathogenic, is often added to food products, and its production of lactic acid is believed to prevent growth of pathogenic organisms.

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Bifidobacterium longum ( French )

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Bifidobacterium longum est une espèce de bactérie lactique de la famille des Bifidobacteriaceae, trouvée dans le tube digestif de l'homme et du porc [1]. Bien qu’elle ne soit pas numériquement dominante, c’est une commensale du tube digestif humain et du vagin où elle inhibe la croissance des bactéries pathogènes et stimule le système immunitaire.

B. longum contient trois sous-espèces longum, infantis et suis, qui étaient à l’origine catégorisées comme des espèces différentes.

Plusieurs souches ont été sélectionnées pour leurs effets probiotiques.

Étymologie et histoire

Le nom de genre Bifidobacterium dérive du latin bifidus « fendu, partagé en deux » et bacterium « bâton » (d’où a été dérivé le mot français de 'bactérie' et le terme de latin scientifique bacterium, par Christian Gottfried Ehrenberg en 1838).

L’épithète spécifique longum dérive du latin longus « long, étendu »

En 1899, Henri Tissier, un pédiatre de l’Institut Pasteur, fut le premier à isoler une bifidobacterium, dans les selles d’un nourrisson. Il l’appela Bacillus bifidus en raison de sa morphologie bifide en Y. En 1924, S. Orla-Jensen de Copenhague, reconnut le genre Bifidobacterium comme un taxon séparé[1]. En 1974, la huitième édition du Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology reconnait Bifidobacterium comme un genre à part entière et renomme Bacillus bifidus en Bifidobacterium bifidum.

Gerhard Reuter isola en 1963 Bifidobacterium longum dans des selles humaines qu’il distingua de B. infantis prévalente dans le tube digestif du jeune enfant et de B. suis, prévalente chez le porc. Puis en 2002, Sakata et al. unifièrent ces trois espèces, B. longum, B. infantis et B. suis, sous le nom de Bifidobacterium longum, sur la base des valeurs d’hybridation ADN-ADN. Finalement Martelli et al. proposèrent de distinguer les sous-espèces B. longum subsp. longum, B. longum subsp. infantis et B. longum subsp. suis [2].

En 1974, la huitième édition du Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology reconnait Bifidobacterium comme un genre à part entière, comprenant 11 espèces[3]. En 2012[1], Bergey’s Manual donne 32 espèces et The Taxonomicon en ligne[4] donne 44 espèces (sept. 2018).

Description

Bifidobacterium longum est une bactérie lactique[5]

  • En forme de bâtonnet au contour irrégulier, le plus souvent incurvé, avec une extrémité parfois ramifiée (la composition du milieu de culture en anaérobiose semble à l’origine du polymorphisme)
  • Non motile
  • Ne formant pas de spore
  • Température optimale de développement est 36 à 38 °C ; la croissance est nulle en dessous de 20 °C et au-dessus de 46 °C.
  • Le pH initial optimum de croissance se situe entre 6,5 et 7,0.

La culture des bactéries anaérobies strictes étant assez délicate, le développement des techniques de séquençage de l’ADN ont permis de mettre en évidence une série de gènes jouant un rôle essentiel dans la croissance de B. longum dans le tube digestif et divers milieux gélosés en anaérobiose.

Sous-espèces :

  • Bifidobacterium longum subsp. longum (Reuter 1963) Mattarelli et al. 2008
  • Bifidobacterium longum subsp. infantis (Reuter 1963) Mattarelli et al. 2008
  • Bifidobacterium longum subsp. suis (Matteuzzi et al. 1971) Mattarelli et al. 2008

Génétique

Le séquençage du génome de B. longum NCC2705 a été effectué par Mark A. Schell et al en 2002[6]. Il comporte 2,26 Mb[n 1], 1 797 gènes et 57 ARN de transfert, 12 ARN ribosomiques [7]. Ces grandeurs peuvent être plus importantes pour certaines autres souches séquencées[n 2].

Il possède un nombre excessif de gènes (plus de 8 % du génome) associés au métabolisme des oligosaccharides. L’absence apparente d’enzymes capables de décomposer certains d’entre eux, comme la pectinase, cellulase et α- et β-amylase, contraste fortement avec le nombre élevé de glycosides hydrolases, capables de catalyser l’hydrolyse de liaisons glycosidiques, notamment des liaisons peu communes trouvées chez les polymères de plantes (comme hémicelluloses, arabinogalactanes, arabinoxylanes, gommes, inulines, galactomannanes). La persistance de B. longum dans le côlon viendrait de sa capacité à cataboliser les substrats peu digérés par l’hôte et les micro-organismes du tube digestif.

Les homologues de la plupart des enzymes nécessaire à la synthèse de l’acide folique (vitamine B9), de la thiamine (vitamine B1) et de la nicotinate (vitamine B3) sont présentes. Par contre, il manque la riboflavine (vit. B2), la biotine (vit. B8), la cobalamine (vit. B12) et le pantothénate (vit. B5) et pyridoxine (vit. B6).

Comme d’autres anaérobie, B. longum peut fermenter des acides aminés. Il possède plus de vingt peptidases qui peuvent produire des acides aminés à partir de substrats protéiniques du tube digestif ou du vagin, là où les glucides sont moins abondants.

Les acides acétiques et lactiques sont les principaux métabolites finaux, avec un ratio molaire théorique d’acide acétique sur acide lactique de 1,5 [8].

Chez le nourrisson

Depuis les travaux pionniers de Tissier en 1900, de nombreuses études ont décrit la succession des bactéries qui colonisent le tube digestif du nouveau-né. Il fut observé que la composition du microbiote intestinal est fortement influencée par la nourriture de l’enfant. Pour ceux qui sont nourris au sein, le microbiote est rapidement dominé par les bifidobactéries, alors que pour ceux nourris au lait maternisé, il héberge une plus grande variété de bactéries, comme les Streptococcus, Bacteroides et les Clostridium en plus des Bifidobacterium [9]. Le développement des techniques moléculaires[n 3] ont permis de suivre l’évolution des populations dominantes de l’intestin de deux nourrissons nés par voie naturelle et nourris au sein. Au début, on observe une colonisation précoce par les espèces de bifidobactéries, détectées respectivement le troisième et quatrième jour de vie. Durant les six premiers mois, la domination des bifidobactéries fut plus intense pour le nourrisson nourris exclusivement au lait maternel que pour celui qui reçut à la fois du lait maternel et du lait maternisé[9]. D’autres bactéries produisant de l’acide par fermentation, comme des streptocoques et des entérocoques, ont été trouvés chez les deux enfants principalement durant la période de nourrissage au sein.

On sait que le lait maternel contient plus de 80 oligosaccharides (en dehors du lactose), dotés de structures peu communes et qui arrivent intacts dans le côlon. La capacité assez exceptionnelle de B. longum de cataliser ces substrats favorise donc son développement.

Évaluation des propriétés probiotiques

Méthodologie

Les bifidobactéries probiotiques sont couramment utilisées dans la prévention et la réduction des infections gastro-intestinales mais il manque un consensus sur la méthodologie d’évaluation de leur efficacité[10]. Les difficultés viennent de la variabilité des résultats suivant les souches d’une même espèce et du manque de corrélations solides entre les essais in vitro et in vivo. Les études in vitro, qui mettent en contact direct bactéries et cellules immunitaires, sont peu conformes à la configuration in vivo, où les probiotiques ingérés ne sont pas (ou marginalement) en contact direct avec le système immunitaire[11]. Si seules les études cliniques en double aveugle contre placebo peuvent être considérés dans un premier temps, le besoin d’avoir un mécanisme d’action oblige néanmoins de recourir aux essais in vivo.

Les mécanismes d'action de B. longum ont fait l'objet de quelques hypothèses : une stimulation pluripotente du système immunitaire [12], la production d’acide organique [13],[14], de bactériocines [15] ou la capacité d’inhiber l’adhésion aux entérocytes des pathogènes ou de prévenir la translocation des bactéries [16].

Une étude in vivo[12] de la capacité de neuf souches différentes de B. longum à induire une production de cytokines par les cellules mononuclées sanguines périphériques (PBMC)[n 4] a mis en évidence des différences prononcées.

Elles ont toutes des profils de production de cytokines différents (en particulier l’IL-10, l’interféron IFN-γ et le facteur de nécrose tumorale TNF-α), sauf pour l’interleukine 4 (IL-4) qui n’a été induite par aucune des souches testées. Par contre toutes les cellules mononuclées PBMC stimulées par les souches de B. longum ont induit une production supérieure d’IL-10 que les PBMC non stimulées. Et les souches B. longum ATCC 15707 et NCC 2705 ont montré une capacité plus élevée de produire IL-10 que les autres souches.

Les infections intestinales à E. coli entéropathogènes

Certaines souches d’Escherichia coli, dites entérohémorragiques (EHEC), sont responsables d’intoxications diarrhéiques par le biais de produits alimentaires contaminés (viande hachée mal cuite, lait cru, etc.). On estime que pour 10 % des patients, l’infection évolue en formes graves, comme la colite hémorragique et le syndrome hémolytique et urémique potentiellement mortel, notamment chez les jeunes enfants et les personnes âgées[17]. La virulence du sérotype E. coli EHEC O157 est associée à la production d’une toxine, appelées shigatoxine 2 (STX2).

Une étude de Fukuda et al. [14] a cherché à voir si l’administration de bifidobactéries à des souris contaminée par E. coli EHEC O157 pouvait les protéger. Quand on contamine des souris axéniques (dépourvues depuis la naissance de tout germe) par E. coli O157, elles meurent sous 7 jours. Mais les souris survivent si préalablement à la contamination, elles ont été colonisées par B. longum subsp. longum JCM 1217. Par contre la colonisation par d’autres souches de bifidobactéries, comme B. adolescentis JCM 1275, n’ont pas d’effet protecteur.

Aucune différence significative dans les paramètres pathologiques et physiologiques n’a été trouvée entre les deux groupes sauf la concentration sanguine de shigatoxine2 qui est 8 fois inférieure chez les souris protégées. L’analyse précise des différences de la composition en métabolites fécaux des souris ayant reçu des souches protectrices et non protectrices, a mis en évidence une concentration plus élevées en acétate (mais pas en lactate ou formiate) chez les souris associées à des souches protectrices. Les auteurs de l’étude ont pu préciser le mécanisme protecteur : l’acétate stimulerait les défenses anti-inflammatoires des cellules intestinales et bloquerait le passage de la shigatoxine2 dans le sang[14].

Toutes les bifidobactéries peuvent produire suffisamment d’acétate en présence de glucose, comme c’est le cas dans le colon proximal (proche du début). Mais dans le colon distal (proche de l’extrémité) où il n’y a plus de glucose, seules les bifidobactéries protectrices seraient capables de produire suffisamment d’acétate en catabolisant le fructose présent. Le séquençage du génome des différentes souches de bifidobactéries a d’ailleurs permis de mettre en évidence des gènes codant des transporteurs de fructose[18] (ainsi que du ribose et du mannose, etc.) présents chez les bactéries protectrices alors que les gènes codant les transporteurs du lactose et du fructo-oligosaccharides sont présents chez les bifidobactéries non protectrices (et protectrices).

Les infections à Salmonella

Les infection entériques à Salmonella sont parmi les diarrhées, les responsables les plus fréquentes de décès, notamment pour les jeunes enfants de moins de 5 ans.

Une étude de l’effet protecteur de la combinaison de deux souches de bifidobactéries (B. longum subsp. infantis CECT 7210 et B. animalis subsp. lactis BPL6) sur 72 porcelets sevrés, contaminés à la Salmonella Typhimurium a été menée par Barba-Vidal et als. [19]. Le traitement probiotique a été administré tous les jours alors que la contamination à la salmonelle s’est faite en une fois par voie orale. Celle-ci a été suivie d’un épisode de diarrhée aigüe et de quatre décès. L’administration de probiotiques n’empêche pas l’infection à la salmonelle mais diminue la charge de salmonelles dans le colon et les fèces.

Les bénéfices dus aux probiotiques retirés par les animaux contaminés furent un accroissement de la prise alimentaire, une réduction de l’excrétion fécale de Salmonella, de la température rectale, une amélioration du ratio villosité : crypte.

Les infections à Rotavirus

On sait que les enfants nourris au sein sont mieux protégés des infections que ceux nourris au lait maternisé, car une forte proportion des immunoglobulines du lait maternel est fait d’anticorps IgA qui assurent une protection contre les infections entériques à rotavirus [20]. Ces anticorps IgA antirotavirus maternels se fixent sur la muqueuse digestive du nourrisson et assurent un rôle protecteur. Ils peuvent d’ailleurs être détectés dans les selles des bébés nourris au sein mais pas chez ceux nourris autrement.

Dans le but de trouver des souches de probiotiques capables d’inhiber les rotavirus humains, Muñoz et al. ont isolé des souches de Bifidobacterium longum dans les selles de bébés nourris au sein[21]. Une nouvelle souche nommée B. longum subsp. infantis CECT 7210 a été sélectionnée sur sa capacité à inhiber in vitro les rotavirus sur des lignées cellulaires. Pour s’assurer de son aptitude à s’établir dans le tube digestif, il a été établi qu’elle est apte à résister à l’acidité gastrique, au sel biliaire, au NaCl et qu’elle possède une bonne adhésion au mucus intestinal.

Une étude menée sur les souris[21] a établi que l’administration de B. longum subsp. infantis CECT 7210 permet de traiter les diarrhées en inhibant les infections à rotavirus. Après une administration de la souche de bifidobactéries, on observe au début un accroissement du niveau des anticorps IgA dans la matière fécale puis une diminution jusqu’au niveau du groupe de contrôle au bout de 168 h.

Une étude antérieure en double aveugle portant sur dix adultes avait testé les effets de la prise journalière de trois yaourts enrichis ou non de B. longum lors de la prise de l’antibiotique (erythromycine). L’absorption de yaourts enrichi de B. longum diminue le poids et la fréquences des matières fécales et des douleurs abdominales[22].

Cancer colorectal

Il a été établi par des études in vivo et in vitro que des souches de B. longum (ainsi que B. breve ou de certains Lactobacilles) pouvaient fournir une protection à l’ADN quand on cherche à l’endommager par des carcinogènes et inhiber l’effet génotoxique de deux carcinogènes sur les rats[23].

Notes

  1. Mb = mégabase, soit un million de bases
  2. B.longum subsp. infantis ATCC 15697, taille du génome = 2,83 Mb, nombre de gène = 2 594, ARNt =79 ; voir O’Callaghan et al. (2016)
  3. comme le contrôle de ARN ribosomal 16S par PCR (amplification en chaîne par polymérase)
  4. les lymphocytes et monocytes

Références

  1. a b et c Whitman et al (eds.), Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology volume 5, the Actinobacteria, Springer, 2012
  2. P. Mattarelli et ql., « Proposal to reclassify the three biotypes of Bifidobacterium longum as three subspecies: Bifidobacterium longum subsp. longum subsp. nov., Bifidobacterium longum subsp. infantis comb. nov. and Bifidobacterium longum subsp. suis comb. nov. », International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, vol. 58,‎ 2008, p. 767-772
  3. BUCHANAN, R.E. et GIBBONS, N.E., Bergey's Manual of determinative Bacteriology,, 8ème 00. Williams et Willkins co., Baltimore, 1974
  4. Universal Taxonomic Services, Zwaag, The Netherlands The Taxonomicon & Systema Naturae 2000, « Genus Bifidobacterium Orla-Jensen 1924 (Approved Lists 1980) » (consulté le 18 septembre 2018)
  5. Pascale Baratte-Euloge, Action comparée sur la flore intestinale de trois laits fermentés au Bifidobacterium. Evaluation de propriétés probiotiques et du comportement de la souche BB 536 de Bifidobacterium longum chez l'homme, Thèse de l’Université de Nancy I, 1992
  6. Mark A. Schell et al, « The genome sequence of Bifidobacterium longum reflects its adaptation to the human gastrointestinal tract », PNAS, vol. 99, no 22,‎ 2002 (lire en ligne)
  7. Amy O’Callaghan and Douwe van Sinderen, « Bifidobacteria and Their Role as Members of the Human Gut Microbiota », Frontiers in Microbiology, vol. 7, no 925,‎ 2016
  8. Van der Meulen et als, « Kinetic analysis of bifidobacterial metabolism reveals a minor role for succinic acid in the regeneration of NADC through its growth-associated production. », Appl. Environ. Microbiol., vol. 72,‎ 2006, p. 5204-5210
  9. a et b Christine F. Favier et al., « Molecular Monitoring of Succession of Bacterial Communities in Human Neonates », APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, vol. 68, no 1,‎ 2002, p. 219-226
  10. Medina et als., « Differential immunomodulatory properties of Bifidobacterium logum strains: relevance to probiotic selection and clinical applications », Clin Exp Immunol., vol. 150, no 3,‎ 2007, p. 531-538 (lire en ligne)
  11. Heyman Martine, « Effets des probiotiques sur le système immunitaire : mécanismes d’action potentiels », Cahiers de Nutrition et de Diététique, vol. 42, no 2,‎ 2007, p. 69-75 (lire en ligne)
  12. a et b Medina et al., « Differential immunomodulatory properties of Bifidobacterium longum strains: relevance to probiotic selection and clinical applications », Clinical and Experimental Immunology, vol. 150,‎ 2007, p. 531-538
  13. Saulnier et al., « Mechanisms of probiosis and prebiosis : considerations for enhanced functional foods », Curr. Opin. Biotechnol, vol. 20,‎ 2009, p. 135-141
  14. a b et c Fukuda et al., « Bifidobacteria can protect from enteropathogenic infection through production of acetate », Nature, vol. 469,‎ 2011
  15. Cheikhyoussef et al., « Antimicrobial proteinaceous compounds obtained from bifidobacteria: from production to their application », Int. J. Food Microbiol., vol. 125,‎ 2008, p. 215-222
  16. Gagnon et al., « In vitro inhibition of Escherichia coli O157:H7 by bifidobacterial strains of human origin », Int. J. Food Microbiol., vol. 92,‎ 2004, p. 69-78
  17. Jean-Jacques Perrier, « Bifidus contre bactéries toxiques. Une souche de bifidobactéries prévient l'évolution mortelle d'une infection alimentaire par un colibacille chez la souris. », Pour la Science,‎ 1er février 2011 (lire en ligne)
  18. Parche S et al., « Sugar Transport Systems of Bifidobacterium longum NCC2705 », J Mol Microbiol Biotechnol, vol. 12, nos 1-2,‎ 2007
  19. Barba-Vidal et als., « The Probiotic Combination of Bifidobacterium longum subsp. infantis CECT 7210 and Bifidobacterium animalis subsp. lactis BPL6 Reduces Pathogen Loads and Improves Gut Health of Weaned Piglets Orally Challenged with Salmonella Typhimurium », Front. Microbiol, vol. 8, no 1570,‎ 2017
  20. Van de Perre P, « Transfer of antibody via mother's milk. », Vaccine, vol. 21, no 24,‎ 2003 (lire en ligne)
  21. a et b Muñoz et al., « Novel Probiotic Bifidobacterium longum subsp. infantis CECT 7210 Strain Active against Rotavirus Infections », Applied and Environmental Microbiology, vol. 77, no 24,‎ 2011 (lire en ligne)
  22. Orrhage K et ql, « Effect of supplements with lactic acid bacteria and oligofructose on the intestinal microflora during administration of cefpodoxime proxetil. », J. Antimicrob Chemother, vol. 46,‎ 2000
  23. Pool-Zobel et al., « Lactobacillus- and bifidobacterium-mediated antigenotoxicity in the colon of rats. », Nutr.Cancer, vol. 26, no 3,‎ 1996
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Bifidobacterium longum: Brief Summary ( French )

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Bifidobacterium longum est une espèce de bactérie lactique de la famille des Bifidobacteriaceae, trouvée dans le tube digestif de l'homme et du porc . Bien qu’elle ne soit pas numériquement dominante, c’est une commensale du tube digestif humain et du vagin où elle inhibe la croissance des bactéries pathogènes et stimule le système immunitaire.

B. longum contient trois sous-espèces longum, infantis et suis, qui étaient à l’origine catégorisées comme des espèces différentes.

Plusieurs souches ont été sélectionnées pour leurs effets probiotiques.

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Bifidobacterium longum ( Indonesian )

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Bifidobacterium longum adalah bakteri gram-positif, berkatalase-negatif. Bakteri ini merupakansalah satu dari 32 spesies yang termasuk dalam genus Bifidobacterium. Bakteri ini berbentuk batang dan hidup dalam saluran pencernaan manusia.[2] [3]

Bakteri ini adalah anaerob mikroaerotoleran dan dianggap sebagai salah satu koloni paling awal pada saluran pencernaan manusia pada masih saat bayi. Walau B. longum tidak secara signifikan hadir dalam saluran pencernaan orang dewasa, bakteri ini dianggap sebagai bagian dari mikrobiota usus dan memproduksi asam laktat yang diyakini dapat mencegah pertumbuhan organisme patogen.[4]

Ketika ditumbuhkan pada media anaerob yang biasa, B. longum membentuk koloni putih mengkilap dengan bentuk cembung. B. longum bersifat non-patogen sehingga sering ditambahkan ke dalam produk makanan. [5]

Referensi

  1. ^ Parte, A.C. "Bifidobacterium". Www.bacterio.net.
  2. ^ Schell, M. A.; Karmirantzou, M.; Snel, B.; Vilanova, D.; Berger, B.; Pessi, G.; Zwahlen, M. -C.; Desiere, F.; Bork, P. (2002). "The genome sequence of Bifidobacterium longum reflects its adaptation to the human gastrointestinal tract". Proceedings of the National Academy of Sciences. 99 (22): 14422–14427. doi:10.1073/pnas.212527599. PMC 137899alt=Dapat diakses gratis. PMID 12381787.
  3. ^ Garrido, D.; Ruiz-Moyano, S.; Jimenez-Espinoza, R.; Eom, H. J.; Block, D. E.; Mills, D. A. (2013). "Utilization of galactooligosaccharides by Bifidobacterium longum subsp. Infantis isolates". Food Microbiology. 33 (2): 262–270. doi:10.1016/j.fm.2012.10.003. PMC 3593662alt=Dapat diakses gratis. PMID 23200660.
  4. ^ Yuan, J.; Zhu, L.; Liu, X.; Li, T.; Zhang, Y.; Ying, T.; Wang, B.; Wang, J.; Dong, H. (2006). "A Proteome Reference Map and Proteomic Analysis of Bifidobacterium longum NCC2705". Molecular & Cellular Proteomics. 5 (6): 1105–1118. doi:10.1074/mcp.M500410-MCP200. PMID 16549425.
  5. ^ Yazawa, K.; Fujimori, M.; Amano, J.; Kano, Y.; Taniguchi, S. I. (2000). "Bifidobacterium longum as a delivery system for cancer gene therapy: Selective localization and growth in hypoxic tumors". Cancer Gene Therapy. 7 (2): 269–274. doi:10.1038/sj.cgt.7700122. PMID 10770636.

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Bifidobacterium longum: Brief Summary ( Indonesian )

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Bifidobacterium longum adalah bakteri gram-positif, berkatalase-negatif. Bakteri ini merupakansalah satu dari 32 spesies yang termasuk dalam genus Bifidobacterium. Bakteri ini berbentuk batang dan hidup dalam saluran pencernaan manusia.

Bakteri ini adalah anaerob mikroaerotoleran dan dianggap sebagai salah satu koloni paling awal pada saluran pencernaan manusia pada masih saat bayi. Walau B. longum tidak secara signifikan hadir dalam saluran pencernaan orang dewasa, bakteri ini dianggap sebagai bagian dari mikrobiota usus dan memproduksi asam laktat yang diyakini dapat mencegah pertumbuhan organisme patogen.

Ketika ditumbuhkan pada media anaerob yang biasa, B. longum membentuk koloni putih mengkilap dengan bentuk cembung. B. longum bersifat non-patogen sehingga sering ditambahkan ke dalam produk makanan.

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Bifidobacterium longum ( Italian )

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Il Bifidobacterium longum è un batterio Gram-positivo, catalasi - negativo, a forma di bastoncello presente nel tratto gastrointestinale umano e una delle 32 specie che appartengono al genere Bifidobacterium.[1][2] È un microaerotollerante anaerobe e considerato uno dei primi colonizzatori del tratto gastrointestinale dei bambini (Bifidobacterium longum infantis).[1] Quando cresciuto su terreno anaerobico generale, B. longum forma colonie bianche e lucide con una forma convessa.[3] Mentre B. longum non è significativamente presente nel tratto gastrointestinale dell'adulto, è considerato parte della microbiota intestinale e si ritiene che la sua produzione di acido lattico impedisca la crescita di organismi patogeni.[4] B. longum non è patogeno e viene spesso aggiunto ai prodotti alimentari.[1][5]

Caratteristiche metaboliche

Grazie alle sue capacità e ai diversi percorsi catabolici, B. longum è considerato una sorta di pulitore dell’intestino, in quanto è in grado di utilizzare una grande varietà di nutrienti per aumentare la sua competitività positiva all'interno del microbiota intestinale [6].

Ricerche

Il Bifidobacterium longum è stato oggetto di numerose ricerche in campo umano. Il suo uso è stato in grado di ridurre la durata e la severità dei sintomi associati alle malattie da raffreddamento, essendo in grado di inibire le neuraminidasi virali[7]. Altri studi riportano che B. longum, insieme ad altri batteri in miscela, è in grado di alleviare i sintomi della colite ulcerosa[8].

La presenza di B. loungum si riduce con il passare dell’età, tuttavia una ricerca pubblicata su Journal of Clinical Gastroenterology nel 2012 ha dimostrato la sua presenza anche negli ultracentenari[9]. L’analisi molecolare delle feci ha dimostrato che il B. longum si trova in biotipi diversi per ciascun ultracentenario, mentre gli stessi non erano presenti nei giovani. Un altro studio, pubblicato nel 2016 ha dimostrato che i diversi biotipi di B. longum isolati dagli ultracentenari avevano lo stesso comportamento nella stimolazione di citochine non infiammatorie[10].

Infine, uno studio canadese rivela i benefici di B. longum non soltanto contro la sindrome dell’intestino irritabile (IBS), ma anche nel ridurre i sintomi di ansia e depressione[11].

Note

  1. ^ a b c M. A. Schell, M. Karmirantzou, B. Snel, D. Vilanova, B. Berger, G. Pessi, M. -C. Zwahlen, F. Desiere, P. Bork, M. Delley, R. D. Pridmore e F. Arigoni, La sequenza del genoma del Bifidobacterium longum riflette il suo adattamento al tratto gastrointestinale umano, in Atti della National Academy of Sciences, vol. 99, n. 22, 2002, pp. 14422-14427, Bibcode:... 9914422S 2002PNAS ... 9914422S, DOI:10.1073/pnas.212527599, PMC 137899, PMID 12381787.
  2. ^ D. Garrido, S. Ruiz-Moyano, R. Jimenez-Espinoza, H. J. Eom, D. E. Block e D. A. Mills, Utilizzo di galattooligosaccaridi da parte di Bifidobacterium longum subsp. Isolati di Infantis, in Microbiologia alimentare, vol. 33, 2013, pp. 262-270, DOI:10.1016/j.fm.2012.10.003, PMC 3593662, PMID 23200660.
  3. ^ S Park, N Ha, D Lee, H An, M Cha, E Baek, J Kim, S Lee e K Lee, Caratterizzazione fenotipica e genotipica degli isolati di bifidobacterium da coreani adulti sani, in Iranian Journal of Biotechnology, vol. 9, n. 3, National Institute of Genetic Engineering and Biotechnology, 2011, pp. 173-179.
  4. ^ J. Yuan, L. Zhu, X. Liu, T. Li, Y. Zhang, T. Ying, B. Wang, J. Wang, H. Dong, E. Feng, Q. Li, J. Wang, H. Wang, K. Wei, X. Zhang, C. Huang, P. Huang, L. Huang, M. Zeng e H. Wang, A proteome reference map and proteomics analysis of bifidobacterium longum NCC2705 [Una mappa di riferimento proteoma e analisi proteomica di Bifidobacterium longum NCC2705], in Proteomica molecolare e cellulare, vol. 5, 2006, pp. 1105-1118, DOI:10.1074/mcp.M500410-MCP200, PMID 16549425.
  5. ^ K. Yazawa, M. Fujimori, J. Amano, Y. Kano e S. I. Taniguchi, Bifidobacterium longum come sistema di somministrazione per la terapia genica del cancro: localizzazione selettiva e crescita nei tumori ipossici, in Cancer Gene Therapy, vol. 7, n. 2, 2000, pp. 269-274, DOI:10.1038/sj.cgt.7700122, PMID 10770636.
  6. ^ Jing Yuan, Li Zhu e Xiankai Liu, A proteome reference map and proteomic analysis of Bifidobacterium longum NCC2705, in Molecular & cellular proteomics: MCP, vol. 5, n. 6, 2006-06, pp. 1105–1118, DOI:10.1074/mcp.M500410-MCP200. URL consultato il 27 marzo 2020.
  7. ^ Michael de Vrese, Petra Winkler e Peter Rautenberg, Effect of Lactobacillus gasseri PA 16/8, Bifidobacterium longum SP 07/3, B. bifidum MF 20/5 on common cold episodes: a double blind, randomized, controlled trial, in Clinical Nutrition (Edinburgh, Scotland), vol. 24, n. 4, 2005-08, pp. 481–491, DOI:10.1016/j.clnu.2005.02.006. URL consultato il 27 marzo 2020.
  8. ^ Yezaz A Ghouri, David M Richards e Erik F Rahimi, Systematic review of randomized controlled trials of probiotics, prebiotics, and synbiotics in inflammatory bowel disease, in Clinical and Experimental Gastroenterology, vol. 7, 9 dicembre 2014, pp. 473–487, DOI:10.2147/CEG.S27530. URL consultato il 27 marzo 2020.
  9. ^ Lorenzo Drago, Marco Toscano e Valentina Rodighiero, Cultivable and pyrosequenced fecal microflora in centenarians and young subjects, in Journal of Clinical Gastroenterology, 46 Suppl, 2012-10, pp. S81–84, DOI:10.1097/MCG.0b013e3182693982. URL consultato il 27 marzo 2020.
  10. ^ Stefania Nicola, Angela Amoruso e Francesca Deidda, Searching for the Perfect Homeostasis: Five Strains of Bifidobacterium longum From Centenarians Have a Similar Behavior in the Production of Cytokines, in Journal of Clinical Gastroenterology, 50 Suppl 2, Proceedings from the 8th Probiotics, Prebiotics & New Foods for Microbiota and Human Health meeting held in Rome, Italy on September 13-15, 2015, 2016 Nov/Dec, pp. S126–S130, DOI:10.1097/MCG.0000000000000678. URL consultato il 27 marzo 2020.
  11. ^ Maria Ines Pinto-Sanchez, Geoffrey B. Hall e Kathy Ghajar, Probiotic Bifidobacterium longum NCC3001 Reduces Depression Scores and Alters Brain Activity: A Pilot Study in Patients With Irritable Bowel Syndrome, in Gastroenterology, vol. 153, n. 2, 08 2017, pp. 448–459.e8, DOI:10.1053/j.gastro.2017.05.003. URL consultato il 27 marzo 2020.

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Bifidobacterium longum: Brief Summary ( Italian )

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Il Bifidobacterium longum è un batterio Gram-positivo, catalasi - negativo, a forma di bastoncello presente nel tratto gastrointestinale umano e una delle 32 specie che appartengono al genere Bifidobacterium. È un microaerotollerante anaerobe e considerato uno dei primi colonizzatori del tratto gastrointestinale dei bambini (Bifidobacterium longum infantis). Quando cresciuto su terreno anaerobico generale, B. longum forma colonie bianche e lucide con una forma convessa. Mentre B. longum non è significativamente presente nel tratto gastrointestinale dell'adulto, è considerato parte della microbiota intestinale e si ritiene che la sua produzione di acido lattico impedisca la crescita di organismi patogeni. B. longum non è patogeno e viene spesso aggiunto ai prodotti alimentari.

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비피도박테리움 롱굼 ( Korean )

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비피도박테리움 롱굼(Bifidobacterium longum), Reuter 1963는 비피도박테리움 (Bifidobacterium) 속의 한 종이다. 비피도박테리움 롱굼(Bifidobacterium longum) 은 인간의 위장관에 존재하는 그람 양성 유산균이며, 카탈라아제 음성, 막대 모양의 세균 및 비피 도박 테 리움 속 (Bifidobacterium) 속에 속하는 32 종 중 하나이다.[1][2]

인체 내의 기능

비피도박테리움 롱굼(B. longum)은 사람의 위장관에 주요 서식지를 형성하며, 다른 비피도박테리움(Bifidobacterium) 종과 함께 유아의 위장관 박테리아 중 최대 90 %를 차지한다.[3][4] 2002년에 비피도박테리움 Bifidobacterium, B. infantis, B. longum 및 B. suis이 발견되었을때, 이전에 별개의 종으로 판단되었던 3종은 각각 infantis, longum 및 suis라는 것이었으나, 이후 B. longum으로 명명된 단일 종으로 통합되었다. 이것은 3종의 DNA 유사성과 96s rRNA 유전자 서열 유사성이 97% 이상으로 분석되었기 때문이다.[5]

각주

  1. Schell, M. A.; Karmirantzou, M.; Snel, B.; Vilanova, D.; Berger, B.; Pessi, G.; Zwahlen, M. -C.; Desiere, F.; Bork, P.; Delley, M.; Pridmore, R. D.; Arigoni, F. (2002). “The genome sequence of Bifidobacterium longum reflects its adaptation to the human gastrointestinal tract”. 《Proceedings of the National Academy of Sciences》 99 (22): 14422–14427. doi:10.1073/pnas.212527599. PMC 137899. PMID 12381787.
  2. Garrido, D.; Ruiz-Moyano, S.; Jimenez-Espinoza, R.; Eom, H. J.; Block, D. E.; Mills, D. A. (2013). “Utilization of galactooligosaccharides by Bifidobacterium longum subsp. Infantis isolates”. 《Food Microbiology》 33 (2): 262–270. doi:10.1016/j.fm.2012.10.003. PMC 3593662. PMID 23200660.
  3. Yuan, J.; Zhu, L.; Liu, X.; Li, T.; Zhang, Y.; Ying, T.; Wang, B.; Wang, J.; Dong, H.; Feng, E.; Li, Q.; Wang, J.; Wang, H.; Wei, K.; Zhang, X.; Huang, C.; Huang, P.; Huang, L.; Zeng, M.; Wang, H. (2006). “A Proteome Reference Map and Proteomic Analysis of Bifidobacterium longum NCC2705”. 《Molecular & Cellular Proteomics》 5 (6): 1105–1118. doi:10.1074/mcp.M500410-MCP200. PMID 16549425.
  4. Xiao, J. Z.; Kondo, S.; Takahashi, N.; Miyaji, K.; Oshida, K.; Hiramatsu, A.; Iwatsuki, K.; Kokubo, S.; Hosono, A. (2003). “Effects of Milk Products Fermented by Bifidobacterium longum on Blood Lipids in Rats and Healthy Adult Male Volunteers”. 《Journal of Dairy Science》 86 (7): 2452–2461. doi:10.3168/jds.S0022-0302(03)73839-9. PMID 12906063.
  5. Mattarelli, P.; Bonaparte, C.; Pot, B.; Biavati, B. (2008). “Proposal to reclassify the three biotypes of Bifidobacterium longum as three subspecies: Bifidobacterium longum subsp. Longum subsp. Nov., Bifidobacterium longum subsp. Infantis comb. Nov. And Bifidobacterium longum subsp. Suis comb. Nov”. 《International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology》 58 (4): 767–772. doi:10.1099/ijs.0.65319-0. PMID 18398167.
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비피도박테리움 롱굼: Brief Summary ( Korean )

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비피도박테리움 롱굼(Bifidobacterium longum), Reuter 1963는 비피도박테리움 (Bifidobacterium) 속의 한 종이다. 비피도박테리움 롱굼(Bifidobacterium longum) 은 인간의 위장관에 존재하는 그람 양성 유산균이며, 카탈라아제 음성, 막대 모양의 세균 및 비피 도박 테 리움 속 (Bifidobacterium) 속에 속하는 32 종 중 하나이다.

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